HIV實驗室規(guī)劃

HIV 實 驗 室 規(guī) 劃

人類免疫缺陷病毒(humanimmunodeficiencyvirus,HIV)及其相關標志的檢測是預防HIV感染和艾滋病臨床治療中重要的環(huán)節(jié)，在艾滋病的防治工作中具有重要作用，如艾滋病的診斷、HIV感染的診斷、血源及器官供體的篩選、流行病學調查、艾滋病病人及HIV感染者的病情動態(tài)觀察、臨床治療療效考核以及HIV實驗室規(guī)劃的安全性和效果鑒定等。

HIV感染標志分為病毒標志、免疫標志和相關標志三大類。病毒標志是指直接從HIV感染者體內分離出病毒或檢出HIV組成成分(抗原或核酸)。免疫標志是指HIV感染所產生的HIV抗原、抗體等免疫物質。相關標志是指HIV感染后與艾滋病病情進展有密切關系的某些標志，如CD4細胞、CD8細胞，β2微球蛋白、有關細胞因子等。這些標志的測定可為HIV感染及臨床療效的考核提供極為重要的診斷、治療和預后指征。目前實驗室規(guī)劃的檢測是艾滋病實驗室檢測中最常用的方法，因為HIV抗體是患者感染HIV后最容易檢出并且持續(xù)時間最長的免疫學標志，而且抗體的檢測方法大多簡便、經濟，易于推廣應用。

在介紹各種HIV實驗室診斷方法之前，為了使實驗室工作人員能夠有效地確保結果準確、可靠、優(yōu)質，我們必須對作為一種感染因子的HIV以及由它所導致的致命性危害有基本的認識。實驗室工作人員應特別注意病毒的結構、抗原組成，人體的免疫反應，診斷試驗的基本原理、試驗結果的解釋，以及為了準確而有效地提供實驗診斷所必需的質量保證措施。如果由于缺乏技術專長或基本知識而造成不正確的試驗結果是不可原諒的?，F將有關內容扼要介紹如下：

一、人類免疫缺陷病毒(HIV)概述：

（一）艾滋病病原體的發(fā)現和命名：

(二)HIV病毒的形態(tài)結構、分類和分型

HIV病毒是帶有包膜的RNA逆轉錄病毒，在分類上屬于逆轉錄病毒科中的慢病毒亞科。目前發(fā)現有HIV-1和HIV-2兩型?，F已將HIV-1分為M組，共10個亞型(A-J)和O組，HIV-2也至少有6個亞型（A-F）。在我國流行的是HIV-1，檢測到的亞型有8種之多，其中B亞型幾乎見于我國各個地區(qū)，而C亞型主要見于我國西南和西北地區(qū)，E亞型則多見于東南沿海和西南邊境地區(qū)。

HIV病毒呈球形或卵圓形顆粒，直徑100-140mm，具有包膜。包膜是在病毒出芽釋放過程中獲得的。從脂質膜上延伸出來的刺和園頭是糖蛋白(gp)。病毒顆粒內部為核心，具有蛋白質衣殼，里面有兩個相同拷貝的核酸(RNA)和病毒的三種酶：逆轉錄酶(RT)、整合酶和蛋白酶。

HIV基因組(RNA)含有9個基因，可分為結構基因和調節(jié)基因。結構基因包括gag、pol和env3個，皆為調節(jié)基因。

(三)實驗室規(guī)劃與診斷技術密切相關的HIV抗原

由三個結構基因編碼的HIV-1抗原如下：
1、gag蛋白：位于病毒顆粒內核心部位，主要有分子量為55000道爾頓的蛋白質(P)，稱P55。P55抗原是前體蛋白，在感染過程的早期產生，爾后裂解成其他核蛋白，包括P24、P17和P15等。

2、env(包膜)糖蛋白：包膜抗原皆為糖蛋白(gp)，根據分子量分別稱為gp160、gp120和gp41。gp160是前體蛋白，是在感染過程中產生的一種成份，隨后裂解成gp120和gp41。gp120是外膜蛋白，組成外膜的72個刺突和園頭。gp41為跨膜蛋白。二者共同參與病毒與突主細胞CD4分子的粘附。

3、pol(聚合酶)蛋白質：包括P66(RT)、P51和P31(整合酶或核酸內切酶)。
盡管HIV-1和HIV-2抗原之間有交叉，但它們也有各自的特異性抗原。

大多數交叉反應是由抗核心抗原的抗體所致，因為這二種不同病毒的gag抗原是非常保守的。各自的這些特異性抗原在HIV-1和HIV-2是相似的，但分子量可略有不同。例如，HIV-2的跨膜蛋白抗原稱為gp36，而某些人則稱之為gp41，又如主要的核心抗原為P24，但在HIV-2又稱P26。

(四)HIV感染的生物學和免疫應答：
人體能對HIV的侵入產生抗體應答，通常是在HIV感染2-10周內機體產生抗體。但也有極少數人感染數月乃至數年后仍測不出抗體，故陰性結果并不說明受檢者絕無感染。絕大多數人在感染過程中都會對各種病毒抗原成份產生免疫應答，抗體滴度可高達1：50000，但也可以很低。感染早期（血清陽轉時）及病程后期（免疫缺陷）時，抗體滴度均較低。

大多數病毒感染者都有IgM抗體產生，但HIV感染者中似乎不完全有IgM應答。對于有IgM抗體應答者，在窗口期檢出IgM抗體是有益的。

HIV基因組可整合到宿主細胞DNA上使機體終身帶有病毒，但機體可能很多年不出現癥狀，成為HIV無癥狀感染者，只是查血時發(fā)現抗—HIV陽性。爾后，在某些因素作用下，病毒被激活后并開始大量復制出現癥狀和各種合并癥，則發(fā)展成艾滋病病人，HIV病毒很容易發(fā)生變異這是研制有效疫苗的主要困難之一。

二、HIV實驗室規(guī)劃

人體感染HIV后，血液中最先出現HIV抗原，然后很快消失直到疾病后期才重新出現。幾周后出現IgM抗體并很快消失，此后,IgG抗體出現并一直存在。因此，HIV感染的實驗室診斷以抗體檢測為主，病毒及相關抗原的檢測為輔。

抗體檢測分為初篩試驗和確證試驗兩種，初篩試驗為陽性的血清必須進一步確證，確證為陽性的方可報告為HIV感染陽性。

多聚酶鏈式反應(PCR)主要用于檢測血漿中HIV的RNA含量，目前主要用于預測母親將HIV傳染給胎兒的可能性以及新生兒的HIV感染狀況。此外，尚可用于判斷病人的預后及監(jiān)測抗病毒治療的效果。

（一）標本收集
HIV感染者血清標本的收集按常規(guī)方法進行，靜脈抽血，不加抗凝劑。標本在室溫或4℃冰箱靜置24小時，待血清析出后作抗體檢測。污染標本可短時間離心后取上清液作檢測，但解釋結果時應慎重。
用于檢測HIV抗原的血液樣本與檢測抗體的樣本的處理有所不同，根據需要，血液樣本需進行核酸處理。采用定量PCR方法檢測病毒含量時，加入肝素的血漿，檢測的RNA含量較未加肝素的血漿樣本高。

檢驗人員應注意自身的防護，在未證實之前，所有的標本均應當作“陽性”標本看待。

（二）HIV抗體的初篩檢測

初篩試驗的要求是敏感性高，理論上要求達到100%，盡可能避免漏掉可能陽性的對象，相對來說，對特異性要求不是太嚴，允許有少量假陽性，這些假陽性可以通過重復試驗和確證試驗排除。

HIV抗體初篩檢測的方法很多，如酶聯(lián)免疫吸附實驗(enzymelinkedimmunosorbentassay,ELISA)、明膠顆粒凝集實驗(gelatineparticleagglutinationassay,PA)、乳膠凝集實驗(latexagglutinationassay,LA)、各種快速檢測實驗(rapidtests)、放射免疫實驗(radioimmunoassay)等。這些實驗使用的抗原早期是完整病毒的裂解產物，稱為第一代試劑，這種抗原常常由于含有宿主細胞的成分而出現假陽性反應，為了獲得可接受的特異性而稀釋標本使試劑的敏感性也有所下降，同時這種抗原制備和純化都比較困難，危險性大。第二代試劑使用重組或合成多肽HIV抗原，選擇與免疫反應相關的抗原決定簇，敏感性和特異性均有所提高，這類抗原制備也更為安全、容易、重復性好。應該注意的是重組抗原有時由于含有載體的組分而出現假陽性結果，多肽抗原由于缺乏合適的立體構象有可能使敏感性下降從而導致假陰性。使用重組或合成多肽抗原制備的雙抗原夾心法試劑盒常常被稱為第三代試劑，這種試劑可以檢測針對HIV抗原的所有抗體亞類，包括IgG、IgA、IgM、IgE、IgD，同時不需要將標本過度稀釋來保證特異性，因而具有較高的敏感性。第四代試劑除使用重組或合成多肽抗原外還包被了P24抗體，可同時檢測抗原和抗體。

1．酶聯(lián)免疫吸附實驗酶聯(lián)免疫吸附實驗（ELISA）是最常見的HIV實驗室規(guī)劃抗體檢測方法，它具有準確性高、價格低廉、判斷結果有客觀標準、結果便于記錄和保存等優(yōu)點，適合于大批量標本的檢測，是獻血員篩選和臨床診斷最常用的方法。

（1）方法和原理：使用最多的ELISA方法是間接法，這種方法的原理是將HIV抗原包被到微孔板或其他固相載體上，如標本中含有HIV抗體，則抗體就會和固相載體上的HIV抗原結合，洗滌去除未結合的非特異性抗體，加入酶標記的抗人免疫球蛋白抗體與HIV抗體結合，形成HIV抗原－HIV抗體－酶標記的抗人免疫球蛋白抗體復合物，最后加入底物發(fā)生酶催化的顯色反應，測定光密度值(opticaldensity,OD)，與判斷標準進行比較，就可以得出標本中HIV抗體是陽性或陰性的結果了。間接法使用的標記抗體通常是抗人IgG，為了提高敏感性有時也加入抗人IgM。這種方法的特異性由包被于固相載體上的HIV抗原決定，相對來說特異性不高，存在非特異性問題。

另一種常用的ELISA方法是雙抗原夾心法，將HIV抗原包被到固相載體上，標本中的HIV抗體與抗原結合形成復合物，由于抗體的雙價或多價性，它同時還能與其他抗原結合，加入酶標記的同一類HIV抗原分子時，后者就會與固相載體上的抗體結合，形成HIV抗原－HIV抗體－酶標記HIV抗原復合物，最后加入底物發(fā)生酶催化的顯色反應，測定光密度值，與判斷標準進行比較，就可以得知標本中HIV抗體是陽性還是陰性。

還有一種ELISA方法是競爭法。它的主要特點是酶標記抗體是特異性的HIV抗體。標本中的HIV抗體與酶標記HIV抗體競爭固相載體上的HIV抗原，操作時同時加入標本和酶標記HIV抗體，如標本中的抗體濃度高，酶標記HIV抗體就不能與固相載體上的HIV抗原結合或結合得很少，顯色反應就較弱，相反，如標本中的HIV抗體含量很少或沒有，大量的酶標記HIV抗體將與固相載體上的HIV抗原結合，顯色反應就很強。因而在競爭法中，光密度值與標本中的抗體含量呈負相關關系。這種方法是將標本與酶標抗體同時加入，需時更短，另外這種方法具有較好的特異性。

（2）結果的判斷：ELISA方法是根據臨界值(cutoffvalue,CO)判斷結果的。臨界值是將檢測的陽性和（或）陰性對照的OD值代入廠商提供的計算公式計算出來的判斷陽性和性結果的界值。對于間接法和雙抗原夾心法，標本OD值與臨界值的比值大于等于1（S／CO≥1）為陽性；對于競爭法，標本OD值與臨界值的比值小于等于1（S／CO≤1）為陽性。
2．從尿液中測抗體
尿液艾滋病病毒（HIV－1）抗體酶聯(lián)免疫診斷試劑盒（CalypteTMHIV-1尿液EIA）是酶免疫測定方法在體外檢測尿液中HIV－1抗體。此法用于實驗室輔助臨床HIV感染診斷。在確定標本HIV－1抗體的結果之前，根據美國疾病控制中心推薦的HIV抗體的診斷步驟，此項檢測重復陽性的標本，用卡里普特公司的劍橋生物HIV－1尿液WesternBlot試劑盒進行確診。
近年與血液檢查相比，尿液檢查有多種優(yōu)點。在尿液中一般不存在HIV病毒?？ɡ锲仗毓镜膭蛏颒IV－1尿液WesternBlot試劑盒，可對于尿液EIA重復陽性標本做確認實驗。
尿液艾滋病病毒（HIV－1）抗體酶聯(lián)免疫診斷試劑盒（calypteTMHIV-1尿液EIA）是利用重組的HIV－1表面抗原在尿液中檢測HIV－1抗體。微孔板的孔中包被gp160膜抗原。把尿液標本或對照與標本緩沖液一起加入孔中溫育。如果標本中存在HIV－1膜抗原的抗體，它們將與孔中的抗原結合。標本緩沖液用來減低孔中其它蛋白及抗體對孔壁的非特異性結合。通過洗滌去除未結合的物質。然后加入堿性磷酸酶標記的羊抗人免疫球蛋白抗體并溫育。酶聯(lián)物與孔中結合到抗原的HIV－1抗體結合。洗滌去除未結合的酶聯(lián)物，然后加入底物（p-NPP）。如標本中含有HIV－1抗體，酶將使孔內液體由無色變?yōu)辄S色，顏色的強度與標本中抗體含量成正比。反應用EDTA終止，用酶標儀在405nm處測吸收峰而讀取結果。
試劑盒中包括陽性及陰性對照，每板應做2個陽性對照及3個陰性對照，將陰性對照平均吸收值加0.18得到cutoff值，標本是通過與Cutoff值比較來判斷是否為陽性或陰性。
第一次檢測陽性標本應用同一標本再重復檢測，如果重復檢測仍為陽性，標本為重復陽性標本。重復陽性標本用卡里普特公司的劍橋生物HIV－1WesterBlot試劑盒進一步確認。
3．膠體金法檢測HIV1/2抗體實驗
膠體金法檢測HIV抗體是一種不需要任何儀器設備的血清／血漿檢測法，它利用免疫層析分析原理來快速檢測血清／血漿中是否含有HIV抗體，從而用于判斷人體是否受到HIV1型／HIV2型病毒感染。
（1）方法和原理
試劑盒采用高度特異性的抗體抗原反應及免疫層析分析技術來定性檢測血清／血漿中是否含有HIV抗體，試劑盒含有被事先固定于膜上測試區(qū)（T）的重組HIV抗原和質控區(qū)（C）的抗-proteinA抗體。
測試時，血標本滴入試劑盒加樣孔（S）內，血標本中的HIV抗體與預包被在膜上的proteinA膠體金結合物反應。然后，混合物隨之在毛細管向上層析，在測試區(qū)（T）與固定在膜上的重組HIV抗原反應。如果血清中含有HIV－1抗體或HIV－2抗體，在測試區(qū)內（T）會出現一條紅色條帶，表明是陽性結果。如果在測試區(qū)內（T）沒有出現紅色條帶，則血清中不含有HIV抗體，表明是陰性結果。無論HIV抗體是否存在于血清中，混合物都會繼續(xù)向上層析至質控區(qū)（C），質控區(qū)的抗ProteinA與ProteinA膠體金結合物反應出現一條紅色條帶。質控區(qū)內（C）所顯現的紅色條帶是判定是否有足夠血標本，層析過程是否正常的標準，同時也作為試劑的內控標準。
（2）結果判定
陽性（＋）：兩條紅色帶出現。一條位于測試區(qū)內（T），另一條位于質控區(qū)內（C）。
陰性（－）：僅質控區(qū)（C）出現一條紅色條帶，在測試區(qū)內（T）無紅色條帶出現。
無效：質控區(qū)（C）未出現紅色條帶，表明不正確的操作過程或試劑盒已變質損壞。在任何情況下，應重新測試。如果問題仍然存在，應立即停止使用此批號產品，并與當地供應商聯(lián)系。
注意：由于樣本中HIV抗體滴度的不同，測試區(qū)（T）內的紅色條帶會顯現出不同深淺的顏色。但是，本試劑盒的測試結果不能做為判定樣本中抗體滴度高低的依據。
4.明膠顆粒凝集試驗
明膠顆粒凝集試驗(PA)是一種快速的HIV血清抗體的檢測方法。先將樣品稀釋，然后加入包被抗原的明膠顆粒，混勻后保溫(一般為室溫)。由于操作方便，且無需特殊儀器設備，很適合于對少量標本的檢測。當血清或血漿中有HIV抗體存在時，經HIV實驗室規(guī)劃抗原致敏的明膠顆粒與抗體發(fā)生抗原—抗體相互作用，產生肉眼可見的凝集反應。
(1)操作方法
①待測血清從1：4開始作倍比稀釋。
②1：8血清稀釋孔加25μ1非致敏粒子，1：16血清稀釋孔加25μ1致敏粒子。
③設置陽性對照血清，使其終末滴度為1：128。
④振蕩混勻，加好蓋板，室溫(20℃)靜置2小時觀察結果
(2)結果觀察
①明膠顆粒沉積在孔底，周邊平滑，或形成致密圓圈為陰性結果；
②孔底呈現均勻的凝集現象，或形成一個大的邊緣不整齊的圓圈，為陽性結果。
(3)注意事項
標本應為新鮮標本，無溶血。若標本與致敏粒子、非致敏粒子均出現反應，應將標本先和非致敏粒子吸附，然后再作檢測。
明膠顆粒凝集試驗

孔號	1	2	3
待檢血清 血清稀釋液 未致敏顆粒 致敏顆粒 稀釋度	1：4	1:16	1:32

(三)、確證（確認）試驗
確證（確認）試驗主要用蛋白印跡試驗(WesternBlot,WB)。蛋白印跡法是將HIV病毒蛋白用十二烷基硫酸鈉－聚丙烯酰胺凝膠(SDS-PolyacrylamideGel)電泳。將分子量大小不等的蛋白帶分離開來，然后再把這些已經分離的不同蛋白帶電轉移到硝酸纖維膜上。將此膜切割成條狀，每一條硝酸纖維膜上均含有經電泳分離過的HIV實驗室規(guī)劃病毒抗原。將待檢血清樣品用稀釋液稀釋成1：100，再把它直接放到硝酸纖維膜上，并靜置一段時間，使其充分接觸反應，血清中若含有HIV抗體，就會與硝酸纖維膜條上的抗原帶相結合。經過沖洗去掉未結合的多余抗體，并加入抗人－IgG酶結合物，洗去未結合的抗人－IgG酶結合物，加入底物，即可使有反應的抗原、抗體結合條帶呈現紫褐色，這表示陽性反應。此法一般是在ELISA或其它初篩檢測陽性后再用來確認。
1、結果判斷
a、膜條沒有條帶出現表示陰性（一）
b、待檢標本出現條帶的色度小于弱陽性對照gp120帶色度時表示可疑（±）。
c、待檢標本出現的條帶色度相當于弱陽性照gp120帶色度但比強陽性條帶的色度弱時表示（+）。
d、待檢標本出現的條帶色度相當于或大于強陽性對照gp120帶色度時表示（++）。
GAGP55，P24，P17
ENVgp160,gp120,gp41
POLp65,p51,p32
(1)以上三個基因組里各出現任何一條帶，而且其色度在“+”或“±”以上者表示陽性。最近，美國CDC規(guī)定：在P24，gp41,gp120/gp160四條帶中出現任何二條帶者表示陽性。
(2)有一個或多個條帶但不符合陽性標準者表示可疑。
(3)未出現任何條帶者表示陰性。
2、注意事項：
a、每次反應之間，要充分洗凈。
b、反應條件是室溫20-30℃。
c、試劑條只能用鑷子夾取，不能用手接觸。
d、每次試驗需設強陽性、弱陽性和陰性對照。
（四）檢驗程度
初篩試驗每一次檢測陰性者可報告陰性，若第一次檢測陽性，則需進行復測，復測時（最好用不同類型的試劑）可同時測定兩孔，判定方法如下：
第一次檢測第2次檢測結果判定
（-）陰性
（+）（-）（-）陰性
（+）（+）（-）/（+）陽性
初篩陽性的標本不能發(fā)報告，必須將血樣或血袋送本?。ū臼校┌滩”O(jiān)測檢驗中心確認實驗室進一步做確證試驗。確證試驗陽性者，由省（市）監(jiān)測中心給送檢單位發(fā)出抗-HIV實驗室規(guī)劃陽性報告，同時上報衛(wèi)生廳（局）和衛(wèi)生部疾病控制司備案。確認試驗陽性和可疑的血袋均需送確認實驗室妥善處理，絕對不能發(fā)出使用。

三、PCR在HIV實驗室規(guī)劃檢測中的應用

聚合酶鏈反應技術(PolymeraseChainReaction,PCR)又稱無細胞分子克隆或特異性DNA序列體外引物定向酶促擴增技術，是近年來發(fā)展起來的一種的短時間內大量擴增特定DNA片段的新技術。應用該方法，可很容易地查到原先那些由于DNA拷貝數少而不足以檢測出來的病毒DNA或其它致病基因，從而大大地推動了疾病的DNA診斷和分子克隆基因組DNA工作的發(fā)展。由于該項技術可將極微量的DNA特異地擴增上百萬倍，甚至能檢測到單分子或每10萬個細胞中僅含1個DNA分子的樣品。它是一種選擇性體外擴增DNA或RNA片段的方法，其特性是由兩個人工合成的引物序列決定的。所謂引物就是與待擴增DNA片段兩翼互補的寡核苷酸，其本質是ssDNA片段。

待擴增DNA模板加熱變性后，兩引物分別與兩條DNA的兩翼序列特異復性。此時，兩引物的3’端相對，5’端相背。在合適條件下，由TaqDNA聚合酶催化引物介導的DNA合成，即引物的延伸。這種實驗過程是在溫度控制下進行的，一個變性--復性--延伸的過程就是一個PCR循環(huán)。PCR就是在合適條件下的這種循環(huán)的不斷重復；延伸的產物經第二循環(huán)變性，亦與引物互補，作為引物引導DNA合成的新模板；因此，第二循環(huán)后延伸的模板由第一循環(huán)的4條增為8條，依此類推，以后每一個循環(huán)后的模板均比前一個循環(huán)增加1倍。理論上講PCR擴增DNA產量是呈指數上升的。PCR技術具有特異性強、敏感性高、快速、簡便、對起始材料質量要求低等特點。

PCR用于檢測HIV的優(yōu)點如下：1.與傳統(tǒng)檢測抗體的方法相比，其靈敏度和特異性更高，從而對HIV的定量檢測提供了有效的手段；2.不依賴于宿主的免疫反應，無須等到免疫系統(tǒng)對HIV產生抗體后才能檢定宿主受HIV感染的狀態(tài)，這有利于對血清陽轉以前標本的檢測和對陽性母親所生嬰兒的HIV感染的調查；3.對潛伏狀態(tài)的HIV的檢測不依賴于HIV在宿主細胞的生長活性。

綜上所述，PCR是對HIV實驗室規(guī)劃核酸檢測的有效手段，是對HIV病毒分離、血清學抗體檢測方法的必要補充。在HIV感染的確診和艾滋病診斷中，核酸的檢測對病原活動的監(jiān)控更加有效方便，因為核酸復制的有無和數量是體內病毒復制情況的直接反映。多聚酶鏈式反應(PCR)主要用于檢測血漿中HIV的RNA含量，目前主要用于預測母親將HIV傳染給胎兒的可能性以及新生兒的HIV感染狀況。此外，尚可用于判斷病人的預后及監(jiān)測抗病毒治療的效果。

四、艾滋病病原學診斷中的幾個問題。

1、明確不同實驗方法的意義和適應范圍：HIV血清學檢測分為初篩和確證兩類。初篩實驗出現的陽性結果，應再次重復實驗，若仍為陽性，則應用確證實驗去證實，只有確證實驗是陽性的標本方可報告為HIV抗體陽性。另外，能引起艾滋病的病毒分為兩型，即HIV-1和HIV-2，兩型病毒間只有少部分抗原有交叉（主要是Gag基因編碼的核蛋白）。因而各型病毒試劑只能有效地檢測出同型病毒的抗體。

2、針對HIV感染不同時期選用不同的檢測手段。HIV原發(fā)感染后的兩周內，用任何方法均無法查到病毒的存在，2周后出現病毒血癥，此時可用抗原檢測方法、檢查病毒抗原或測定病毒逆轉錄酶活性，而不能用血清學方法，因為抗體要到感染后6-8周才會出現。此后就只能用抗體檢測方法，直到艾滋病的出現，因為在這段時間HIV抗原很難從血清中查到，待發(fā)展到艾滋病階段時才會重新出現。

3、HIV抗體測定的靈敏度、特異度和預測值：

表1HIV抗體測定的靈敏度、特異度和預測值

檢驗結果	抗體情況		總計
陽性	有 真的 陽性（a）	無 假的 陽性(b)	所有陽性 試驗（a+b）
陰性	假的 陰性(c) 都有抗體	真的 陰性（d） 都無抗體	所有陰性 試驗（c+d） 總計
	（a+c）	(b+d)	(a+b+c+d)

敏感性：是指在有抗體存在的標本中，檢出抗體的準確性。敏感性低的試驗將有許多假陰性。
敏感性=a/a+c
特異性：是指在沒有抗體存在的標本中，檢測其抗體缺失的準確性。特異度低的試驗將有許多假陽性。

特異性=d/b+d
理想的是，一種試驗應當具有100%的敏感性和100%的特異性。但實際上，沒有一種生物試驗能滿足這樣的要求。但在敏感性和特異性最高的試驗方法當中現行的HIV檢測方法還是可取的，在理想的實驗室條件下，許多市售的HIV抗體試驗方法的敏感性和特異性都在99%以上。除非由于檢驗人員造成人為誤差，這種檢驗方法所固有的特性是不會出現明顯改變的。

陽性試驗預測值（PPV）a/a+b
陰性試驗預測值（NPV）d/c+d
試劑的敏感性和特異性可以衡量它的優(yōu)劣，但并不能決定一個測定結果正確與否的可能性大小，后者是由測定的預測值決定的。一個測定的陽性或陰性預測值，即這個陽性或陰性的結果是真陽性或真陰性的可能性。這除與所用試劑的優(yōu)劣有關外，還取決于測定對象本身患病率的高低。如表2所示，一個陽性HIV血清檢測結果的真實性，對舊金山同性戀人群可高達99.88%，而對正常人則為18.94%，反之，一個陰性結果的真實性對前者不足90%，而對后者則高達99.997%。

表2ELISA法HIV-1抗體測定的預測值

人群		預測值
		陽性		陰性
舊金山同性戀人群		99.88		89.06
美國非高危人群		18.94		99.997

因而我們在實際檢測工作中，對我國普通公民初篩試驗結果陰性的預測值是非常高的,即可初步排除HIV感染的可能性，而出現陽性結果，則必需慎之又慎，要嚴格經蛋白印跡等確定實驗證實后方可報告。相反，對來自疫區(qū)的外國人或在疫區(qū)長期居住的歸國人員可疑陰性結果，則不能輕易放過，以免因漏診而造成嚴重的后果。

4、HIV抗體檢測反應強度與HIV感染的概率

許多HIV抗體檢測方法除了是一種定性實驗外，還同時是一種半定量實驗。這可表現于測定不同稀釋度的血清的反應性，得出陽性血清的最高稀釋度，而ELISA方法則可根據光密度（0D）值的強度直接確定。反應性越強的血清，含有HIV抗體的可能性也就越大。例如，表3中的HIV感染率為30/10萬的正常獻血員，中等強度反應時，HIV抗體陽性概率僅為1.13%，而在高強度反應時該概率則激增到86.1%，與同樣強度的來自HIV感染率極高的吸毒人群（45000/10萬）的概率相近。

表3HIV感染機率與ELISA反應強度的關系

人群HIV感染率ELISA反應強度(%)

(/10萬)低度中度高度 非高危獻血員300.00071.1386.1 高危獻血950.00223.4895.2 軍人1500.00365.3996.9 吸毒者450001.9196.699.9

注：（1）數字表示相應強度反應的血清中含有HIV抗體的概率（%）；
（2）低度為OD<1，中度為1，高度為OD>6。

5、檢測結果的處理，如果在HIV檢測中發(fā)現了陽性結果，一方面應立即按國家法定乙類傳染病上報程序迅速上報。對已成年患者應通知本人，并向其說明陽性檢測結果的意義以及HIV感染與艾滋病之間的關系，同時還要忠告他（她）有義務不從事可將病毒傳給他的活動。另一方面，檢測單位也有責任為患者保密，以使其在原來的環(huán)境中生活下去。這不僅僅是出于對患者的人道，避免因無知而產生的歧視，同時也是有效控制艾滋病蔓延的重要保證?？梢韵胂螅绻滩〔∪嘶騂IV感染者一經發(fā)現，就被趕出單位、學校、家庭，還會有誰再來做檢側。這樣勢必會使攜帶HIV的人潛伏于社會無法被發(fā)現，艾滋病將傳播得更快、更廣。

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